动物模型名称：FSH联合HCG致超排怀孕小鼠模型2、实验动物种属：KM小鼠或NIH小鼠3、实验动物性别：雌性4、实验动物年龄：3~4周龄5、实验动物体重：16~18g6、实验动物环境：SPF级1、实验方法：注射用重组人促卵泡***（FSH）联合注射绒促性素（HCG）诱导。对雌鼠于按5IU/只腹腔注射50IU/mL的FSH溶液，注射46~48h后按5IU/只再腹腔注射50IU/mL的HCG溶液，并于注射HCG当天下午约16：00~17：00按雌雄鼠1：1合笼。次日早上检查雌鼠阴栓情况。2、检测标准：合笼后次日雌鼠检查出现阴栓，表明成功构建了超排怀孕小鼠模型。开展小鼠疾病模型初步研究分析小鼠疾病模型研究初步结果与生物学信息资料等相关知识间的差距！闵行区咨询疾病动物模型建模
该模型能够帮助我们研究pirb基因在免疫系统和神经系统的功能以及下游的调节机制。本发明的另一目的在于提供上述小鼠动物模型的构建方法。本发明所采用的第一种技术方案是：pirb基因敲入的小鼠动物模型，包括确定pirb基因的待敲入的特异性靶位点grna1和grna2，将pirb基因敲入c57bl/6j小鼠的rosa26基因的内含子1内，所述grna1的基因序列如seqid**所示，grna2的基因序列如。本发明所采用的第二种技术方案为：pirb基因敲入的小鼠动物模型的构建方法，将步骤3中性成熟的阳性f0小鼠分别与野生型鼠交配繁一代，获得f1代杂合子小鼠，通过pcr、测序和southern杂交确定动物基因型；将步骤4获得的f1代杂合子小鼠近交获得f2代纯合子小鼠。闵行区咨询疾病动物模型建模上海东寰告诉您如何选择好的动物模型。
呼吸系统H01代码下分为18个小类，笔者浏览近五年面上项目，大致筛选出各个代码下常见的研究方向或疾病（毕竟只是人工筛选，准确性欠佳，敬请谅解）。接下来为大家介绍研究较多的几个疾病的常见造模方法，分别为、COPD、急性肺损伤、肺纤维化、肺动脉高压。动物模型实验动物：小鼠、大鼠、豚鼠造模试剂：卵清蛋白（OVA）、HDM（尘螨）获得方式：一般自己构建。在造模过程先采用抗原致敏（腹腔注射OVA和氢氧化铝混合物或者鼻内滴入HDM）使动物机体内存在致敏物，然后气道局部激发（反复雾化或者滴鼻激发），诱导。
动物模型名称：胆管结扎致肝胆管性肝硬化大鼠模型2、实验动物种属：SD大鼠3、实验动物性别：雄性4、实验动物年龄：5周5、实验动物体重：200~220g6、实验动物环境：SPF级1、实验方法：用胆管结扎法。大鼠按10mg/kg体重腹腔注射3％戊巴比妥钠麻醉，腹部皮肤消毒，无菌操作沿腹部正中线剪开腹腔，分离出胆管，在胆管近端和远端2处结扎胆管。手术后正常饲养28天。28天后解剖取肝脏进行组织病理学检查。2、检测标准：肝脏病理切片镜下小胆管伴纤维组织增生积分按程度为0-3分：0分：无明显病变；1分：呈局灶性分布，受累面积在30%以下者；2分：呈多灶性分布，受累面积在30%-70%之间者；3分：呈弥漫性分布，受累面积在70%以上者。统计分析：每份标本在低倍视野(10×10)下依次选取左上、右上、左下、右下、中间5个视野（共1.5mm2）进行观察，测定并计算视野内小胆管伴纤维组织增生总面积。小鼠是人类疾病理想的动物模型不仅因为小鼠在生理上与人类极为相似而且小鼠的遗传资源非常丰富。
实验样本分类实验一般采取样本有：血液样本、组织样本和细胞样本。通常，组织样本采集后，应立即用等渗溶液（PBS或生理盐水）尽量把血液漂洗干净（除非血液也是分析对象），用滤纸或纱布吸干，把样本分切成几分，每份的体积约2个黄豆大小，每份用一个管子装。血液样本的采集应根据不同实验的要求，将会采取不同策略。血清样本：全血中不加抗凝剂，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黄色透明液体。（全血标本室温放置2小时3000rpm/min离心15min）血浆样本：全血中加抗凝剂，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黄色透明液体。（可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后30分钟内于2-8℃，3000rpm/min离心15min）如果是做生化\ELISA等检测可以考虑血浆和血清，根据获得的样本量可考虑分装成100-500μl/管，可避免反复冻融造成的检测误差。生化：建议优先选择血清，其次选择肝素抗凝血浆；ELISA：建议优先选择血清，其次选择肝素或EDTA抗凝血浆；凝血实验：只能选择枸橼酸钠抗凝血浆；血常规：只能选择EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白细胞、血小板等建议用抗凝全血。如果要做流式建议用专门的流式用血液收集管，防止表面抗原的丢失，或者尽快安排就近检测。样本处理取样完后。小鼠疾病模型应用于转化医学研究中的思路与策略该研究从临床患者中筛选到潜在的致病基因。闵行区咨询疾病动物模型建模
小鼠疾病模型研究也是人相关疾病药物研发的起点。闵行区咨询疾病动物模型建模
然后再入固定液，但要注意防止组织损伤。要熟悉采集部位。要能准确的按解剖部位采集，如胰腺，一般取胰岛较多的胰腺尾部；肺应取有细支气管及带有软骨片的小支气管部。如果实验需进行多组织样本的采集，采集顺序应按照：消化，神经系统，皮肤，肌肉等的顺序进行。选好组织块的切面。熟悉某些组织成分安排，然后决定其切面的走向；如一长管状以横切面较好。切除不需要的部分。特别是组织周围的脂肪等，应尽可能掉，否则给固定、脱水、浸蜡、切片等带来一些不必要的问题。组织样品的固定（1）固定的方法：①小块组织固定法：从动物取下的小块组织，立即置入液态固定剂（这是应用经常的方法）。②注射/灌注固定法：某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部或需要对整个脏器或整个动物进行固定，这时宜采用注射固定法，将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。另，空腔组织比如肺，肺内含有空气，固定液难以渗入，建议先做肺灌注，使得肺充盈满固定液以后再进行保存，如果空腔中气体没有有效排出，后续可能影响固定效果（没有灌注的肺组织会浮在液体表面不利于固定，切片以后也会看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比较细小而薄的标本。闵行区咨询疾病动物模型建模
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